實驗背景:在細胞生物學研究中,單細胞懸液的質量直接影響后續分析與培養結果。傳統手動制備小鼠骨骼肌單細胞懸液,不僅操作繁瑣、耗時費力,還容易因人為操作差異導致細胞活率低、碎片多。今天分享一套標準化儀器制備方案,流程更高效、結果更穩定,新手也能輕松上手!
實驗核心目標:借助單細胞懸液制備儀與配套試劑,將小鼠骨骼肌組織快速解離為形態完整、活率高的單細胞懸液,滿足單細胞測序、細胞培養、流式分析等后續實驗需求。
實驗材料與儀器清單:
1.實驗材料:
小鼠骨骼肌組織、骨骼肌組織單細胞解離酶(貨號:MJ010)、紅細胞裂解液(貨號:MJ103)、預冷 PBS 緩沖液、臺盤藍染色液。
2.儀器清單:
無菌手術器械套裝(眼科剪、鑷子)、單細胞懸液制備儀、高速冷凍離心機、倒置顯微鏡、無菌 EP 管、精準移液系統。
標準化儀器制備步驟:
1.試劑預處理:
將骨骼肌組織單細胞解離酶置于冰上解凍,全程保持冰浴狀態備用,避免酶活性流失。
2.小鼠處理與組織取材:
采用斷頸法處死小鼠后,迅速分離出骨骼肌組織,用預冷 PBS 緩沖液反復沖洗,去除表面血液、筋膜等雜質。
稱取約 130mg 潔凈的骨骼肌組織,剪碎、放入單細胞懸液制備儀的研磨管中,加入所需酶。

3.儀器消化:
采用斷頸法處死小鼠后,迅速分離出骨骼肌組織,用預冷 PBS 緩沖液反復沖洗,去除表面血液、筋膜等雜質。
稱取約 130mg 潔凈的骨骼肌組織,剪碎、放入單細胞懸液制備儀的研磨管中,加入所需酶。
4.紅細胞裂解與清洗:
用 3-5 倍體積的紅細胞裂解液重懸細胞沉淀,冰上孵育 10 分鐘,期間用移液系統輕柔吹打 2-3 次。隨后再次以 4℃、300g 離心 5 分鐘,棄上清后用預冷 PBS 緩沖液清洗重懸 2 次,去除殘留裂解液。
5.細胞重懸與鏡檢質控:
用適量 PBS 緩沖液重懸細胞沉淀,取少量細胞懸液與臺盤藍染色液按比例混合,滴加至細胞計數板上,通過倒置顯微鏡觀察細胞形態并計算活率。
實驗結果與優勢:

1.核心結果:
①胞形態:經儀器制備的細胞透亮圓潤,形態完整,無明顯細胞碎片和組織殘渣。
②細胞活率:臺盤藍染色檢測顯示,活細胞率穩定≥95%,滿足高要求實驗標準。
③細胞數量:離心后可見明顯細胞沉淀,重懸后的單細胞懸液均勻分散,無團聚現象。

2.儀器制備化優勢:
①效率提升:組織破碎、酶解消化等步驟通過儀器標準化完成,全程耗時縮短 30% 以上。
②穩定性強:避免手動操作的力度、速度差異,實驗結果可重復性高。
③損傷更?。簝x器研磨和振蕩溫和,減少細胞機械損傷,顯著提升細胞活率。
儀器化制備方案讓小鼠骨骼肌單細胞懸液的制備更高效、更穩定,為后續實驗提供可靠的樣本保障。

